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Salud branquial en el salmón: el enfoque nutricional de Chile

Por la Dra. Vivi Koletsi, Technical Support Specialist de Alltech. Colabora con el equipo global de acuicultura de la compañía en todo lo relacionado con las tecnologías aplicadas a especies acuáticas.

Por Jocelyn Vargas
6 de agosto, 2025 - 20:15 hrs.
Dra. Vivi Koletsi, Technical Support Specialist de Alltech. Créditos: Alltech,.

Dra. Vivi Koletsi, Technical Support Specialist de Alltech. Créditos: Alltech,.

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Desde sus inicios a fines de la década de 1970, la salmonicultura en Chile ha experimentado un crecimiento sostenido, superando los 1,07 millones de toneladas de producción en 2022 (FAO, 2024). Actualmente, el salmón chileno se posiciona como la segunda mayor fuente de salmón de cultivo a nivel mundial, solo por detrás de Noruega. Este sector se ha consolidado como una de las principales industrias exportadoras del país, desempeñando un rol clave en la economía nacional y en el desarrollo de las comunidades locales (Ceballos‐Concha et al., 2025). Desafíos sanitarios en la salmonicultura chilena Este crecimiento, sin embargo, no ha sido lineal; la industria del salmón de cultivo en Chile ha enfrentado brotes sanitarios que han desencadenado graves crisis económicas y sanitarias, así como reformas normativas posteriores (Bachmann-Vargas et al., 2021). Entre 2007 y 2009, la rápida propagación del virus de la anemia infecciosa del salmón (ISAV) provocó el brote sanitario y la crisis económica más significativa en la historia de la salmonicultura chilena, con un impacto económico directo estimado en US$2.000 millones (Mardones et al., 2024). Si bien los brotes virales como el ISAV han generado los impactos más devastadores, en años recientes los trastornos branquiales han emergido como un desafío sanitario persistente y cada vez más complejo para la producción acuícola de salmón (Fridman et al., 2021). Nuevos desafíos en salud branquial La enfermedad branquial amebiana (AGD, por sus siglas en inglés), causada por el parásito Neoparamoeba perurans, sigue siendo una preocupación relevante, especialmente en zonas de cultivo de alta densidad y gran escala, como la región patagónica del sur de Chile (Bustos et al., 2011). Los efectos combinados de múltiples patógenos —incluidos bacterias, virus y parásitos— junto con factores ambientales como el aumento de la temperatura del agua y la disminución de su calidad, así como ciertas prácticas de manejo, pueden incrementar el riesgo y la gravedad de los cuadros branquiales (Rozas et al., 2012). Estas condiciones pueden favorecer la aparición de la enfermedad branquial compleja (CGD, por sus siglas en inglés), una condición de etiología multifactorial y con patrones histopatológicos complejos (Herrero et al., 2018), que tiende a manifestarse con mayor frecuencia durante los meses de verano y comienzos del otoño. ¿Por qué unas branquias saludables son clave para el éxito del cultivo de salmón? Las branquias del salmón son órganos multifuncionales, responsables no solo de la respiración e intercambio gaseoso, sino también de la regulación iónica (osmorregulación), el equilibrio del pH, la detoxificación, la excreción de residuos nitrogenados y funciones inmunológicas (Evans et al., 2005). Cuando están en buen estado, las branquias actúan como una barrera compleja que cumple un rol físico, químico, microbiano e inmune, siendo fundamentales en la defensa del pez frente a agentes patógenos (Chen et al., 2023). La disrupción de esta barrera en salmones del Atlántico en sistemas de cultivo puede comprometer sus funciones fisiológicas, lo que se traduce en estrés crónico, menor crecimiento, peor conversión alimenticia y aumento en la mortalidad. Todos estos factores afectan directamente la calidad del producto final y la rentabilidad del cultivo (Herrero et al., 2018). Estrategias nutricionales para fortalecer la salud branquial La evidencia científica sugiere que mejorar la funcionalidad de la barrera branquial en salmones de cultivo —y en peces en general— puede ayudar a mitigar los efectos del estrés asociado a factores ambientales no controlables. Diversos estudios han demostrado que una de las formas más eficaces de fortalecer esta función es a través de intervenciones nutricionales adecuadas en la composición de la dieta (Chen et al., 2023). Una fracción rica en mananos (MRF, por sus siglas en inglés), desarrollada por Alltech a partir de la pared celular de la levadura Saccharomyces cerevisiae, ha sido estudiada en distintas especies acuícolas por su capacidad para proteger la superficie branquial tanto en condiciones normales como durante desafíos sanitarios. Utilizando al pez dorado (Carassius auratus Linnaeus) como especie modelo, Huang et al. (2022) demostraron que la suplementación dietaria con MRF durante un período de 60 días incrementó significativamente la longitud de las láminas branquiales y el número de células mucosas en las branquias (Figura 1). Posteriormente, tras un desafío sanitario de 14 días, los peces alimentados con la dieta enriquecida con MRF presentaron un mayor número de células mucosas, menores cargas patógenas, menor tasa de infección y mayor supervivencia en comparación con el grupo control (Figura 2). Figura 1: Tras 60 días de alimentación, las branquias de los peces dorados del grupo MRF presentaron láminas branquiales más largas y un mayor número de células mucosas en comparación con el grupo control (Huang et al., 2022). Figura 2: Tras 14 días de desafío con patógenos, los peces dorados del grupo MRF presentaron un mayor número de células mucosas en las branquias, menores cargas patógenas y tasas de infección, y una mayor tasa de supervivencia en comparación con el grupo control (Huang et al., 2022). Aquate™: Soluciones nutricionales a medida para la acuicultura Aquate™ es la línea innovadora de soluciones de Alltech para la producción acuícola, compuesta por una gama de premezclas nutricionales personalizables diseñadas para mantener un equilibrio protector entre las especies acuáticas, su nutrición y el entorno en el que se desarrollan. Alcanzar dicho equilibrio permite optimizar el rendimiento productivo de los animales y conservar poblaciones de peces saludables. Desarrolladas en estrecha colaboración con productores acuícolas de todo el mundo, las soluciones Aquate™ incorporan las tecnologías centrales de Alltech —incluyendo tecnologías de péptidos, fermentación en estado sólido y fermentación de levaduras—. Estas mezclas se adaptan a los objetivos productivos específicos según la especie, etapa del ciclo de vida y los desafíos ambientales o sanitarios presentes. Aquate™ busca ayudar a los productores a desbloquear el máximo potencial de sus animales y, al mismo tiempo, mejorar su rentabilidad. En respuesta al creciente desafío sanitario asociado a la salud branquial en la salmonicultura chilena, Alltech ha desarrollado una solución nutricional dirigida como parte del portafolio de Aquate™. Para conocer más sobre esta solución y su evaluación en un ensayo técnico con salmón del Atlántico cultivado en Chile, se puede contactar al equipo de Alltech Chile para acceder a detalles sobre las formulaciones personalizadas de Aquate™. Referencias Bachmann-Vargas, P., van Koppen, C. K., & Lamers, M. (2021). Re-framing salmon aquaculture in the aftermath of the ISAV crisis in Chile. Marine Policy, 124, 104358. Bustos, P. A., Young, N. D., Rozas, M. A., Bohle, H. M., Ildefonso, R. S., Morrison, R. N., & Nowak, B. F. (2011). Amoebic gill disease (AGD) in Atlantic salmon (Salmo salar) farmed in Chile. Aquaculture, 310(3-4), 281-288. Ceballos‐Concha, A., Asche, F., & Cárdenas‐Retamal, R. (2025). Salmon Aquaculture in Chile: Production Growth and Socioeconomic Impacts. Reviews in Aquaculture, 17(1), e12993. Chen, X., Liu, S., Ding, Q., Teame, T., Yang, Y., Ran, C., … & Zhou, Z. (2023). Research advances in the structure, function, and regulation of the gill barrier in teleost fish. Water Biology and Security, 2(2), 100139. Evans, D. H., Piermarini, P. M., & Choe, K. P. (2005). The multifunctional fish gill: dominant site of gas exchange, osmoregulation, acid-base regulation, and excretion of nitrogenous waste. Physiological reviews, 85(1), 97-177. Fridman, S., Tsairidou, S., Jayasuriya, N., Sobolewska, H., Hamilton, A., Lobos, C., … & Herath, T. (2021). Assessment of marine gill disease in farmed Atlantic salmon (Salmo salar) in Chile using a novel total gross gill scoring system: A case study. Microorganisms, 9(12), 2605. Herrero, A., Thompson, K. D., Ashby, A., Rodger, H. D., & Dagleish, M. P. (2018). Complex gill disease: an emerging syndrome in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.). Journal of Comparative Pathology, 163, 23-28. Huang, X., Liu, S., Zuo, F., Luo, L., Chen, D., Ou, Y., … & He, Z. (2022). cMOS enhanced the mucosal immune function of skin and gill of goldfish (Carassius auratus Linnaeus) to improve the resistance to Ichthyophthirius multifiliis infection. Fish & Shellfish Immunology, 126, 1-11. Mardones, F. O., Martinez-Lopez, B., Valdes-Donoso, P., Carpenter, T. E., & Perez, A. M. (2014). The role of fish movements and the spread of infectious salmon anemia virus (ISAV) in Chile, 2007–2009. Preventive veterinary medicine, 114(1), 37-46. Rozas, M., Bohle, H., Grothusen, H., & Bustos, P. (2012). Epidemiology of amoebic gill disease (AGD) in Chilean salmon industry between 2007 and 2010. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 32(5), 181-188.  

Desde sus inicios a fines de la década de 1970, la salmonicultura en Chile ha experimentado un crecimiento sostenido, superando los 1,07 millones de toneladas de producción en 2022 (FAO, 2024). Actualmente, el salmón chileno se posiciona como la segunda mayor fuente de salmón de cultivo a nivel mundial, solo por detrás de Noruega. Este sector se ha consolidado como una de las principales industrias exportadoras del país, desempeñando un rol clave en la economía nacional y en el desarrollo de las comunidades locales (Ceballos‐Concha et al., 2025).

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Desafíos sanitarios en la salmonicultura chilena

Este crecimiento, sin embargo, no ha sido lineal; la industria del salmón de cultivo en Chile ha enfrentado brotes sanitarios que han desencadenado graves crisis económicas y sanitarias, así como reformas normativas posteriores (Bachmann-Vargas et al., 2021). Entre 2007 y 2009, la rápida propagación del virus de la anemia infecciosa del salmón (ISAV) provocó el brote sanitario y la crisis económica más significativa en la historia de la salmonicultura chilena, con un impacto económico directo estimado en US$2.000 millones (Mardones et al., 2024).

Si bien los brotes virales como el ISAV han generado los impactos más devastadores, en años recientes los trastornos branquiales han emergido como un desafío sanitario persistente y cada vez más complejo para la producción acuícola de salmón (Fridman et al., 2021).

Nuevos desafíos en salud branquial

La enfermedad branquial amebiana (AGD, por sus siglas en inglés), causada por el parásito Neoparamoeba perurans, sigue siendo una preocupación relevante, especialmente en zonas de cultivo de alta densidad y gran escala, como la región patagónica del sur de Chile (Bustos et al., 2011).

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Los efectos combinados de múltiples patógenos —incluidos bacterias, virus y parásitos— junto con factores ambientales como el aumento de la temperatura del agua y la disminución de su calidad, así como ciertas prácticas de manejo, pueden incrementar el riesgo y la gravedad de los cuadros branquiales (Rozas et al., 2012).

Estas condiciones pueden favorecer la aparición de la enfermedad branquial compleja (CGD, por sus siglas en inglés), una condición de etiología multifactorial y con patrones histopatológicos complejos (Herrero et al., 2018), que tiende a manifestarse con mayor frecuencia durante los meses de verano y comienzos del otoño.

¿Por qué unas branquias saludables son clave para el éxito del cultivo de salmón?

Las branquias del salmón son órganos multifuncionales, responsables no solo de la respiración e intercambio gaseoso, sino también de la regulación iónica (osmorregulación), el equilibrio del pH, la detoxificación, la excreción de residuos nitrogenados y funciones inmunológicas (Evans et al., 2005).

Cuando están en buen estado, las branquias actúan como una barrera compleja que cumple un rol físico, químico, microbiano e inmune, siendo fundamentales en la defensa del pez frente a agentes patógenos (Chen et al., 2023).

La disrupción de esta barrera en salmones del Atlántico en sistemas de cultivo puede comprometer sus funciones fisiológicas, lo que se traduce en estrés crónico, menor crecimiento, peor conversión alimenticia y aumento en la mortalidad. Todos estos factores afectan directamente la calidad del producto final y la rentabilidad del cultivo (Herrero et al., 2018).

Estrategias nutricionales para fortalecer la salud branquial

La evidencia científica sugiere que mejorar la funcionalidad de la barrera branquial en salmones de cultivo —y en peces en general— puede ayudar a mitigar los efectos del estrés asociado a factores ambientales no controlables. Diversos estudios han demostrado que una de las formas más eficaces de fortalecer esta función es a través de intervenciones nutricionales adecuadas en la composición de la dieta (Chen et al., 2023).

Una fracción rica en mananos (MRF, por sus siglas en inglés), desarrollada por Alltech a partir de la pared celular de la levadura Saccharomyces cerevisiae, ha sido estudiada en distintas especies acuícolas por su capacidad para proteger la superficie branquial tanto en condiciones normales como durante desafíos sanitarios.

Utilizando al pez dorado (Carassius auratus Linnaeus) como especie modelo, Huang et al. (2022) demostraron que la suplementación dietaria con MRF durante un período de 60 días incrementó significativamente la longitud de las láminas branquiales y el número de células mucosas en las branquias (Figura 1). Posteriormente, tras un desafío sanitario de 14 días, los peces alimentados con la dieta enriquecida con MRF presentaron un mayor número de células mucosas, menores cargas patógenas, menor tasa de infección y mayor supervivencia en comparación con el grupo control (Figura 2).

Figura 1: Tras 60 días de alimentación, las branquias de los peces dorados del grupo MRF presentaron láminas branquiales más largas y un mayor número de células mucosas en comparación con el grupo control (Huang et al., 2022).
Figura 2: Tras 14 días de desafío con patógenos, los peces dorados del grupo MRF presentaron un mayor número de células mucosas en las branquias, menores cargas patógenas y tasas de infección, y una mayor tasa de supervivencia en comparación con el grupo control (Huang et al., 2022).

Aquate™: Soluciones nutricionales a medida para la acuicultura

Aquate™ es la línea innovadora de soluciones de Alltech para la producción acuícola, compuesta por una gama de premezclas nutricionales personalizables diseñadas para mantener un equilibrio protector entre las especies acuáticas, su nutrición y el entorno en el que se desarrollan. Alcanzar dicho equilibrio permite optimizar el rendimiento productivo de los animales y conservar poblaciones de peces saludables.

Desarrolladas en estrecha colaboración con productores acuícolas de todo el mundo, las soluciones Aquate™ incorporan las tecnologías centrales de Alltech —incluyendo tecnologías de péptidos, fermentación en estado sólido y fermentación de levaduras—. Estas mezclas se adaptan a los objetivos productivos específicos según la especie, etapa del ciclo de vida y los desafíos ambientales o sanitarios presentes. Aquate™ busca ayudar a los productores a desbloquear el máximo potencial de sus animales y, al mismo tiempo, mejorar su rentabilidad.

En respuesta al creciente desafío sanitario asociado a la salud branquial en la salmonicultura chilena, Alltech ha desarrollado una solución nutricional dirigida como parte del portafolio de Aquate™. Para conocer más sobre esta solución y su evaluación en un ensayo técnico con salmón del Atlántico cultivado en Chile, se puede contactar al equipo de Alltech Chile para acceder a detalles sobre las formulaciones personalizadas de Aquate™.

Referencias

Bachmann-Vargas, P., van Koppen, C. K., & Lamers, M. (2021). Re-framing salmon aquaculture in the aftermath of the ISAV crisis in Chile. Marine Policy, 124, 104358.

Bustos, P. A., Young, N. D., Rozas, M. A., Bohle, H. M., Ildefonso, R. S., Morrison, R. N., & Nowak, B. F. (2011). Amoebic gill disease (AGD) in Atlantic salmon (Salmo salar) farmed in Chile. Aquaculture, 310(3-4), 281-288.

Ceballos‐Concha, A., Asche, F., & Cárdenas‐Retamal, R. (2025). Salmon Aquaculture in Chile: Production Growth and Socioeconomic Impacts. Reviews in Aquaculture, 17(1), e12993.

Chen, X., Liu, S., Ding, Q., Teame, T., Yang, Y., Ran, C., … & Zhou, Z. (2023). Research advances in the structure, function, and regulation of the gill barrier in teleost fish. Water Biology and Security, 2(2), 100139.

Evans, D. H., Piermarini, P. M., & Choe, K. P. (2005). The multifunctional fish gill: dominant site of gas exchange, osmoregulation, acid-base regulation, and excretion of nitrogenous waste. Physiological reviews, 85(1), 97-177.

Fridman, S., Tsairidou, S., Jayasuriya, N., Sobolewska, H., Hamilton, A., Lobos, C., … & Herath, T. (2021). Assessment of marine gill disease in farmed Atlantic salmon (Salmo salar) in Chile using a novel total gross gill scoring system: A case study. Microorganisms, 9(12), 2605.

Herrero, A., Thompson, K. D., Ashby, A., Rodger, H. D., & Dagleish, M. P. (2018). Complex gill disease: an emerging syndrome in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.). Journal of Comparative Pathology, 163, 23-28.

Huang, X., Liu, S., Zuo, F., Luo, L., Chen, D., Ou, Y., … & He, Z. (2022). cMOS enhanced the mucosal immune function of skin and gill of goldfish (Carassius auratus Linnaeus) to improve the resistance to Ichthyophthirius multifiliis infection. Fish & Shellfish Immunology, 126, 1-11.

Mardones, F. O., Martinez-Lopez, B., Valdes-Donoso, P., Carpenter, T. E., & Perez, A. M. (2014). The role of fish movements and the spread of infectious salmon anemia virus (ISAV) in Chile, 2007–2009. Preventive veterinary medicine, 114(1), 37-46.

Rozas, M., Bohle, H., Grothusen, H., & Bustos, P. (2012). Epidemiology of amoebic gill disease (AGD) in Chilean salmon industry between 2007 and 2010. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 32(5), 181-188.

 

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