Plancton Andino impulsa nuevas herramientas para anticipar riesgos de FAN en centros de cultivo

Las Floraciones Algales Nocivas (FAN) continúan siendo uno de los principales desafíos sanitarios y productivos para la salmonicultura chilena. A diez años del evento de 2016, que provocó la muerte de aproximadamente 40.000 toneladas de salmónidos y pérdidas superiores a US$700 millones para la acuicultura, la industria ha avanzado en sus capacidades de monitoreo. Sin embargo, la posibilidad de anticipar el comportamiento de estos fenómenos y dimensionar sus efectos sobre los peces sigue siendo una tarea pendiente. Este fue uno de los principales temas abordados por Francisca Muñoz, jefa del Laboratorio de Fitoplancton y Bio-Óptica de Plancton Andino, durante su presentación “FAN en el Ecosistema Marino: Antecedentes e Integración de Herramientas de Monitoreo”, realizada en la Charla Técnica de InfoSALMON “Desafíos Sanitarios en Etapa de Engorda”. La exposición puso de relieve un cambio en la forma de estudiar las floraciones: pasar de un monitoreo basado principalmente en la identificación taxonómica y cuantificación de organismos a un enfoque integrado, capaz de incorporar información sobre la actividad fotosintética, disponibilidad de nutrientes, características celulares y condiciones del ecosistema marino. Para la industria, esta evolución resulta especialmente relevante, considerando que la presencia de una especie potencialmente nociva no necesariamente significa que se desarrollará una floración de gran magnitud ni que tendrá el mismo impacto en todos los escenarios ambientales. Diez años después de la crisis de 2016: la necesidad de mejorar la anticipación La presentación de Muñoz contextualizó los avances tecnológicos a partir de los principales eventos registrados durante la última década. El episodio de 2016 marcó un antes y un después para la salmonicultura nacional. Las altas densidades de Leptocylindrus danicus, Pseudochattonella verruculosa y Alexandrium catenella estuvieron asociadas a uno de los eventos de mayor impacto productivo registrados en el país. Como consecuencia, se impulsaron modificaciones regulatorias mediante el D.S. N.º 151, que modificó el Reglamento Ambiental para la Acuicultura (RAMA), incorporando los sistemas de Prealerta y Alerta Acuícola y los planes de acción ante contingencias de FAN. Sin embargo, los antecedentes presentados muestran que estos fenómenos no corresponden a episodios aislados. Entre los eventos destacados del período 2016-2026 figuran la floración de Heterosigma akashiwo en Comau y Aysén durante marzo y abril de 2021, con concentraciones de entre 35.000 y 58.000 células/mL; el registro de Thalassiosira pseudonana en el estuario de Reloncaví durante noviembre de 2023, con 92.000 células/mL; y nuevos episodios de Heterosigma akashiwo en Hornopirén en 2024 y en los barrios 2 y 3 durante marzo y abril de 2026. La presentación también incorporó un antecedente reciente en Magallanes: en octubre de 2026 se registró una floración de Leptocylindrus minimus, con una concentración de 11.000 células/mL. Este último episodio permitió observar cómo las características de distribución vertical y las condiciones meteorológicas pueden aportar información relevante para interpretar el desarrollo de una floración. De acuerdo con los antecedentes expuestos, el evento se concentró principalmente en los primeros 10 metros de la columna de agua. Asimismo, las mediciones mediante FRRf3 mostraron una mayor respuesta fotosintética potencial en esa misma capa, coincidiendo con condiciones de baja precipitación, baja intensidad del viento, días soleados y períodos de calma. La observación evidencia la importancia de incorporar la profundidad y las condiciones ambientales al análisis, evitando interpretar una concentración celular como un dato aislado. FlowCam: conocer las características de las células y seguir su comportamiento Una de las tecnologías destacadas por Muñoz fue FlowCam, herramienta utilizada desde 2016 en el Laboratorio de Bio-Óptica de Plancton Andino, en Puerto Varas. Este sistema permite obtener imágenes y realizar conteos celulares, además de medir características como largo, ancho, diámetro y biovolumen de las partículas analizadas. Su rango de trabajo comprende partículas de aproximadamente 5 a 600 micrómetros, utilizando distintas celdas y objetivos ópticos. Su aplicación abarca el análisis de fitoplancton y especies asociadas a FAN, zooplancton, larvas de Caligus y espectros de partículas presentes en filtros. Uno de sus aportes más relevantes es que permite avanzar hacia una caracterización más detallada de las comunidades, complementando la microscopía tradicional y generando referencias para sistemas automatizados como SAMS. La presentación también mostró su aplicación en una evaluación realizada durante la floración de Heterosigma akashiwo en abril de 2026, cuyo objetivo fue estudiar la influencia de sistemas de mitigación mediante aireación y surgencia sobre las células de esta especie. Los resultados mostraron una disminución de la concentración celular en las muestras experimentales respecto del control. En las muestras con aireación, la concentración de H. akashiwo disminuyó un 44% a 0 metros y un 47% a 5 metros. En las muestras con surgencia, las reducciones alcanzaron un 63% y un 59%, respectivamente. No obstante, un aspecto importante del análisis fue que no se observó evidencia de ruptura celular en ninguna de las muestras. Este resultado permite distinguir entre la disminución de la concentración de organismos y la degradación celular, dos aspectos que no necesariamente ocurren de manera simultánea y que deben evaluarse por separado al estudiar la respuesta de las microalgas frente a medidas de mitigación. FRRf3: medir la actividad fotosintética del fitoplancton Otro de los avances presentados corresponde a la Fluorometría de Altas Tasas de Repetición (FRRf3), tecnología que permite evaluar aspectos del funcionamiento fotosintético del fitoplancton. A diferencia de las metodologías centradas en determinar qué organismos están presentes y en qué cantidad, esta herramienta aporta información sobre la respuesta fotoquímica del fotosistema II, mediante parámetros como la eficiencia fotoquímica máxima (Fv/Fm) y su sección eficaz de absorción de luz. Muñoz destacó que las distintas comunidades fitoplanctónicas pueden presentar respuestas fisiológicas diferentes frente a las condiciones ambientales. Como ejemplo, la presentación mostró que Pseudochattonella registra valores relativamente altos de Fv/Fm, mientras que las criptofíceas presentan valores inferiores, aun cuando ambas pueden mostrar una sección eficaz de absorción similar. La diferencia es relevante porque permite comprender que la capacidad de capturar luz y la eficiencia con que esa energía se utiliza en los procesos fotoquímicos son propiedades distintas. Para el monitoreo de FAN, esta información agrega una dimensión fisiológica al análisis, permitiendo complementar los datos de abundancia y composición taxonómica con antecedentes sobre la actividad de las comunidades. Sílice: un nuevo indicador para seguir las floraciones de diatomeas Uno de los aspectos novedosos de la exposición fue la incorporación del análisis de sílice disuelto como una metodología complementaria para estudiar las floraciones de diatomeas. El fundamento está en que estos organismos necesitan sílice para construir sus frústulos, estructuras que conforman su pared celular. Por lo tanto, la disponibilidad de este nutriente condiciona su crecimiento y desarrollo. Según explicó la especialista, mientras las diatomeas utilizan sílice para formar sus estructuras celulares, los dinoflagelados no requieren este elemento para construir sus paredes. Esta diferencia permite utilizar la disponibilidad de sílice como una variable adicional para interpretar los cambios en la comunidad fitoplanctónica. Durante una floración de diatomeas, el consumo de este nutriente puede modificar su concentración en el agua y reflejar parcialmente la utilización del recurso por parte de la comunidad. Su disminución, analizada junto con la abundancia celular, composición taxonómica y otros nutrientes, podría aportar información sobre la evolución y el estado nutricional de una floración. La presentación también abordó las diferencias entre los ciclos de nutrientes. Mientras el nitrógeno puede reciclarse rápidamente en las capas superficiales, el sílice utilizado en la formación de los frústulos puede salir de la zona productiva y retornar más lentamente desde aguas profundas o mediante aportes de los ríos. Este comportamiento permite comprender por qué el sílice puede agotarse antes que el nitrógeno en determinadas condiciones. Sin embargo, Muñoz planteó una precisión importante para interpretar esta metodología: el agotamiento del sílice no implica necesariamente un aumento de flagelados ictiotóxicos. La respuesta depende también de las condiciones ambientales y de las características de cada especie. Por ello, su utilidad está en complementar el monitoreo y aportar contexto nutricional, no en establecer por sí solo una señal de riesgo sanitario. ADICFito: una biblioteca digital para fortalecer la identificación del fitoplancton La integración de información también se está desarrollando mediante herramientas digitales. En este ámbito, Plancton Andino presentó ADICFito, una plataforma que funciona como biblioteca de imágenes microscópicas y red de colaboración entre usuarios y especialistas. El sistema permite consultar imágenes, utilizar filtros de búsqueda y comparar muestras propias con colecciones previamente seleccionadas y verificadas por especialistas. Entre sus contenidos figuran colecciones temáticas de microalgas nocivas, con 15 especies y múltiples imágenes por especie, además de registros de distintas zonas y ambientes. La herramienta busca facilitar la identificación de organismos observados en muestras de centros de cultivo, permitiendo que los usuarios compartan fotografías de microscopía y reciban orientación de analistas que revisan y responden cada aporte. Un aspecto especialmente interesante es su próxima incorporación a WhatsApp, junto con herramientas de inteligencia artificial para apoyar la clasificación taxonómica. La funcionalidad permitirá enviar fotografías directamente desde un teléfono celular, con hasta ocho imágenes por aporte. El sistema solicitará información sobre el centro y la profundidad de la muestra, mientras que el proceso de revisión y respuesta continuará a cargo de las analistas de Plancton Andino. De esta manera, la plataforma busca facilitar el acceso a referencias taxonómicas y fortalecer la colaboración entre quienes realizan monitoreo en terreno y los especialistas encargados de analizar las muestras. El desafío: integrar las herramientas para construir indicadores de riesgo La principal conclusión de la presentación es que ninguna tecnología, por sí sola, permite comprender completamente el comportamiento de una FAN. La microscopía clásica sigue siendo fundamental para identificar organismos y cuantificar su abundancia. El análisis de sílice aporta información sobre el contexto nutricional, mientras que FRRf3 permite evaluar la respuesta fotoquímica del fitoplancton. A su vez, FlowCam y sistemas automatizados como SAMS contribuyen a caracterizar organismos y partículas mediante imágenes, dimensiones y herramientas de clasificación. La combinación de estas metodologías permite ampliar la interpretación de los eventos, incorporando información que va más allá de la presencia o ausencia de especies potencialmente nocivas. Este enfoque coincide con lo planteado previamente por Francisca Muñoz en entrevista con InfoSALMON, donde identificó como principal brecha de la industria la dificultad de convertir una alerta temprana en una predicción confiable del impacto sobre los peces. En esa oportunidad, la especialista sostuvo: “La principal brecha sigue siendo transformar una alerta temprana en una predicción confiable del impacto sobre los peces. Detectar una especie no necesariamente permite saber si el evento crecerá, cuánto durará o cuándo generará un riesgo para los peces”. Y agregó que el siguiente paso consiste en integrar biología, oceanografía e historial de datos para construir indicadores dinámicos de riesgo que permitan apoyar decisiones preventivas antes de que ocurra el impacto, junto con avanzar en ingeniería de mitigación. Para la salmonicultura, el desafío está precisamente en esa transición: pasar de identificar una floración cuando ya está presente a comprender qué condiciones favorecen su desarrollo, cómo evoluciona en la columna de agua y qué características podrían incrementar su potencial de afectar a los peces. La integración de herramientas analíticas, información ambiental y plataformas digitales representa un avance en esa dirección. El objetivo ya no es solamente saber qué microalga está presente, sino contar con mejores antecedentes para interpretar lo que está ocurriendo en el ecosistema y anticipar posibles escenarios de riesgo.